細胞培養之“麻煩精”支原體的防治方法

支原體是細胞培養中常見的污染，。因支原體屬于直徑介于0.2-2µm的最小原核生物，形態易變，所以即使用濾網給培養基過濾20次，它還會在已經感染的培養基中“陰魂不散"，而又因為它缺少細胞壁，沒有這層外衣包裹之后的它，可以成功逃過大部分抗生素的“追殺"。在細胞培養液中，支原體可達到107-108CFU/mL（CFU=Colony Forming Unit，是一種支原體的濃度測量單位）而不使培養液混濁及影響細胞生長，而因為在初感染時它不會給細胞帶來任何影響，這一點，估計黑膠蟲都要被它隱蔽得方式折服。

那么支原體污染對細胞有什么影響呢？

1.支原體污染導致細胞收縮，貼壁細胞脫落裂解，細胞空泡化。。。

2.引起細胞蛋白質、DNA、rRNA、mRNA 的合成障礙；

3.使培養基成分發生改變（如發酵型支原體降解糖類產生酸性物質），影響細胞代謝

4.破壞細胞膜的完整性，影響細胞信號傳遞；

5.引起細胞的染色體異常；

6.使惡性細胞致癌能力下降、影響淋巴細胞分化以及細胞中病毒的產量。

支原體污染有哪些檢測方法？

1.相差顯微鏡檢測；

2.低張處理地衣紅染色觀察；

3.DNA熒光染色法；

4.電鏡檢測；

5.3-H胸腺嘧啶摻入法；

6.聚合酶鏈反映法；

7.免疫學方法；

8.支原體的培養。

支原體污染的補救的方法：

1.抗生素排除法：可以用5-10倍于常用量的沖擊法，加入高濃度抗生素后作用24-48小時，再換入常規培養液，有時可能有效。推薦用量：慶大霉素 200ug/ml ,四環素10ug/ml ，卡那霉素50ug/ml 。對于支原體污染抗生素應用，預防性應用比污染后使用好。

2 . 加溫除菌：根據支原體耐熱性能差的特點。將受支原體污染的細胞置于41度中作用5-10小時可以殺滅支原體。但由于41度對培養細胞本身也有較大的影響，故處理前，應*行預試驗，確定出最大限度殺傷支原體而對細胞影響較小的處理時間。

3.裸鼠過繼法：將支原體污染的細胞用0,25%胰酶,0.02%EDTA消化制成單細胞懸液后用PBS洗滌離心2次,調細胞密度至10^7 /ml;經小鼠背部皮下接種0.2ml細胞約10~15天后即可形成移植瘤;3~4周后無菌條件下取出移植瘤組織,剔除壞死部分,用注射器針芯在200目篩下將組織壓碎使細胞釋放入含0.1%EDTA的無血清DMEM培養液中:將細胞懸液小心加入含有淋巴細胞分離液離心管上層,室溫下水平離心 3000r/min,20min;用吸管吸出兩種液體界面層的細胞，置無血清DMEM培養液中,再用無血清DMEM將細胞洗滌離心1次,用*培養液調細胞密度至5×105個/ml,置37℃,5%CO2培養箱中培養。